Preview

Вопросы гематологии/онкологии и иммунопатологии в педиатрии

Расширенный поиск

Сравнительная характеристика способности лимфоцитов к пролиферации и их жизнеспособность в цельной донорской крови, обработанной гамма-излучением и методом патогенредукции с применением рибофлавина и ультрафиолета

https://doi.org/10.24287/1726-1708-2018-17-3-66-73

Полный текст:

Аннотация

Трансфузия лейкоцитов в составе различных компонентов крови – причина ряда посттрансфузионных реакций и осложнений, в том числе посттрансфузионной реакции «трансплантант против хозяина (птРТПХ). Единственный эффективный метод профилактики птРТПХ – облучение компонентов крови ионизирующим излучением, но использование его источников связано с техническими и материальными трудностями. Альтернативой этого метода стала новая технология редукции патогенов (ТРП) в компонентах крови, их мишень – нуклеиновые кислоты. Эффективная инактивация лейкоцитов продемонстрирована в тромбоцитных концентратах и плазме крови. Определено влияние ТРП, основанной на сочетанном действии рибофлавина (РФ) и ультрафиолета (УФ), на жизнеспособность и пролиферирующий потенциал лимфоцитов в обработанной цельной крови. Образцы цельной крови в объеме 450 ± 50 мл были получены у 35 здоровых добровольцев; каждый образец делили на три неравные части: одна часть – необработанный контроль, вторую часть подвергали гамма-облучению, третью часть – редукции патогенов под воздействием РФ и УФ (Mirasol, Terumo BCT Inc.). Отбор проб проводили в день заготовки (день 0), далее – с интервалом в 24 ч в течение трех последующих суток. Жизнеспособность лимфоцитов после применения обоих методов обработки достоверно снижалась по сравнению с контролем и на протяжении всего периода хранения по сравнению с показателями, полученными в день 0. Достоверных различий жизнеспособности между обработанными группами не обнаружено. Спонтанная пролиферативная активность необработанных и гамма-облученных лимфоцитов статистически значимо не отличалась, однако стимулированная пролиферация в гамма-облученных образцах была достоверно ниже. В образцах, обработанных РФ и УФ, как спонтанная, так и стимулированная пролиферация были снижены до порога обнаружения. В одной из процедур получены два эффекта: инфекционная и иммунологическая безопасность. Применение ТРП на цельной крови дает потенциальную возможность получения трех патоген-редуцированных и иммунологически безопасных компонентов крови, что снижает стоимость и техническую нагрузку на персонал. Использование системы РФ и УФ, в отличие от применения источников ионизирующего излучения, не имеет сложных требований безопасности и трудностей в обслуживании. По нашим данным, при использовании ТРП РФ и УФ на цельной крови, как и при гамма-облучении, жизнеспособность лимфоцитов значительно снижается, особенно в процессе хранения, но при этом обработка РФ и УФ, в отличие от гамма-облучения, полностью подавляет любую пролиферативную активность лимфоцитов. Полученные результаты демонстрируют потенциал для использования данной технологии как альтернативы облучению.

Об авторах

Я. М. Байзянова
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Дмитрия Рогачева» Минздрава России
Россия

Байзянова Яна Маратовна, сотрудник лаборатории физиологии и патологии стволовых клеток 

117997, Москва, ГСП-7, ул. Саморы Машела, 1 Тел.: 8 (495) 287-6570 (доб. 5625)



Н. Н. Старостин
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Дмитрия Рогачева» Минздрава России
Россия


И. Б. Кумукова
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Дмитрия Рогачева» Минздрава России
Россия


Е. Ю. Осипова
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Дмитрия Рогачева» Минздрава России
Россия


П. Е. Трахтман
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Дмитрия Рогачева» Минздрава России
Россия


Список литературы

1. Seftel M.D., Growe G.H., Petraszko T., Benny W.B., Le A., Lee C.Y., et. al. Universal prestorageleukoreduction in Canada decreases platelet alloimmunization and refractoriness. Blood 2004; 103 (1): 333–9.

2. Hendrickson J.E., Hillyer C.D. Noninfectious serious hazards of transfusion. Anesthesiology Analgesic 2009; 108 (3): 759–69.

3. Council of Europe. Guide to the preparation, use and quality assurance of blood components. Strasbourg, France: Council of Europe Press, 2010.

4. Price T.H. Provision of single-donor platelet transfusions: patient and producer perspectives. Apheresis: Principles and Practice, second edition. Bethesda: AABB Press, 2003.

5. Гордеев А.В. Aктуальное состояние методических и технических решений радиационной обработки крови, ее компонентов и препаратов. Саратовский научно-медицинский журнал 2014; 10 (4).

6. Жибурт Е.Б. Инактивация патогенов в клеточных компонентах крови. Трансфузиология 2017; 18 (3).

7. Castro G., Merkel P.A., Giclas H.E., Gibula A., Andersen G.E., Corash L.M., et. al. Amotosalen/UVA treatment inactivates T-cells more effectively than the recommended gamma dose for prevention of transfusion-associated graft-versus-host disease. Transfusion 2018; 58 (6): 1506–15.

8. Marschner S. White blood cell inactivation after treatment with riboflavin and ultraviolet light. Transfusion 2010; 50: 2489–98.

9. Fast L.D. Inactivation of human white blood cells in platelet products after pathogen reduction technology treatment in comparison to gamma irradiation. Transfusion 2010; 51 (7): 1397–404.

10. Jackman R.P., Heitman J.W., Marschner S., Goodrich R.P., Norris P.J., et. al. Understanding loss of donor white blood cell immunogenicity after pathogen reduction: mechanisms of action in ultraviolet illumination and riboflavin treatment. Transfusion 2009; 49 (12): 2686–99.

11. Fast L.D., DiLeone G., Li J., Goodrich R. Functional inactivation of white blood cells by Mirasol treatment. Transfusion 2006; 46 (4): 642–8.

12. Schmidt M. First transmission of human immunodeficiency virus Type 1 by a cellular blood product after mandatory nucleic acid screening in Germany. Transfusion 2009; 49 (9): 1836–44.

13. Sharma S.P. Dengue outbreak affects more than 7000 people in Nepal. BMJ 2010; 41: 5496–6.

14. Rasonglès P., Angelini-Tibert M.F., Simon P., Currie C., Isola H., Kientz D. Transfusion of platelet components prepared with photochemical pathogen inactivation treatment during a Chikungunya virus epidemic in Ile de La Réunion. Transfusion 2009; 49: 1083–91.

15. Stramer S.L., Hollinger F.B., Katz L.M., Kleinman S., Metzel P.S., Gregory K.R. et. al. Emerging infectious disease agents and the potential threat to transfusion safety. Transfusion 2009; 49 (2): 1S–29S.

16. Elikaei A., Hosseini S.M., Sharifi Z. Inactivation of model viruses and bacteria in human fresh frozen plasma using riboflavin and long wave ultraviolet rays. Iranian Journal of Microbiology 2017; 9 (1): 50–4.

17. Marschner S., Goodrich R. Pathogen reduction technology treatment of platelets, plasma and whole blood using riboflavin and UV light. Transfusion Medicine 2011; 38: 8–18.

18. Kleinman S., Stassinopoulos A. Risks associated with red blood cell transfusions: potential benefits from application of pathogen inactivation. Transfusion 2015; 55: 2983–3000.

19. Jackman R.P. Understanding loss of donor white blood cell immunogenicity after pathogen reduction: mechanisms of action in ultraviolet illumination and riboflavin treatment. Transfusion 2009; 49: 2686–99.

20. Okazaki T., Inaba T., Tatsu Y., Tero R., Urisu T., Morigaki K. Polymerized lipid bilayers on a solid substrate: morphologies and obstruction of lateral diffusion. Langmuir 2009; 25: 345–51.

21. Johnson L. Treatment of platelet concentrates with the mirasol pathogen inactivation system modulates platelet oxidative stress and NF-B activation. Transfusion Medicine and Hemotherapy 2015; 42 (3): 167–73.

22. Reddy H.L. Toxicity testing of a novel riboflavin-based technology for pathogen reduction and white blood cell inactivation. Transfusion medicine reviews 2008; 22 (2): 133–53.


Для цитирования:


Байзянова Я.М., Старостин Н.Н., Кумукова И.Б., Осипова Е.Ю., Трахтман П.Е. Сравнительная характеристика способности лимфоцитов к пролиферации и их жизнеспособность в цельной донорской крови, обработанной гамма-излучением и методом патогенредукции с применением рибофлавина и ультрафиолета. Вопросы гематологии/онкологии и иммунопатологии в педиатрии. 2018;17(3):66-73. https://doi.org/10.24287/1726-1708-2018-17-3-66-73

For citation:


Bayzanova Y.M., Starostin N.N., Kumukova I.B., Osipova E.Y., Trakhtman P.E. Prolipheration and aviability of whole blood lymphocytes after gamm-irradiation or pathogen reduction with riboflavin and ultraviolet. Pediatric Hematology/Oncology and Immunopathology. 2018;17(3):66-73. (In Russ.) https://doi.org/10.24287/1726-1708-2018-17-3-66-73

Просмотров: 35


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1726-1708 (Print)
ISSN 2414-9314 (Online)